Recolección correcta y precauciones para muestras de pruebas microbianas
La recolección correcta de muestras microbianas clínicas afecta directamente los resultados del cultivo y la identificación microbiana. Los resultados confiables de las pruebas pueden guiar el diagnóstico y el tratamiento clínicos y proporcionar una base para la medicación clínica científica y el control exitoso de las infecciones. El uso correcto y racional de los medicamentos antimicrobianos, retrasar la resistencia bacteriana, reducir el abuso de medicamentos antimicrobianos y monitorear las infecciones hospitalarias son los primeros y más importantes pasos. El siguiente es el conocimiento que les aporto sobre la recolección correcta y las precauciones de las muestras de pruebas microbiológicas. Bienvenido a leer.
Primero, recolecte muestras de sangre
1. Método de recolección
(1) Limpie la piel local con alcohol al 75%.
(2) Después de que la piel esté seca, use 2-2,5 yodo para desinfectar desde el centro del punto de punción, con un rango de no menos de 5 cm (diámetro), y no toque la piel desinfectada. con tus dedos.
(3) Después de que el yodo en la piel esté seco (aproximadamente 1 minuto), pinche y extraiga sangre. La cantidad de sangre extraída es de 5 a 10 ml para adultos y de 1 a 5 ml para bebés.
(4) Inmediatamente después de la extracción de sangre, inocule el frasco de cultivo al lado de la cama y agítelo rápida y uniformemente para evitar la coagulación, pero no lo agite violentamente para evitar la hemólisis.
2. Medidas preventivas
(1) Si se sospecha bacteriemia, se debe extraer sangre lo antes posible. La extracción de sangre puede aumentar la tasa positiva si la temperatura corporal aumenta (38,5 ℃). ), pero también se debe evitar el retraso en la espera.
(2) Para aquellos que han usado medicamentos antibacterianos pero no pueden dejar de tomarlos, se debe extraer sangre antes de la siguiente dosis. No recolecte sangre para infusión intravenosa de medicamentos antibacterianos ni para catéteres venosos y cánulas arteriales.
(3) La proporción entre el medio de cultivo y la sangre debe ser de 10:1 para diluir antibióticos, anticuerpos y otras sustancias bactericidas en la sangre. Algunas personas recomiendan que, para los pacientes que reciben tratamiento con medicamentos antibacterianos, la proporción del cultivo; El medio para la extracción de sangre debe ser 20:1 o más.
(4) Estudios recientes han demostrado que cambiar la aguja antes de inyectar sangre en el medio de hemocultivo puede provocar fácilmente una contaminación.
(5) Recoger sangre de cada caso al menos dos veces, con un intervalo de 0,5-1 h, para aumentar la tasa positiva y distinguir las bacterias infecciosas de las contaminantes.
(6) En pacientes con sospecha de endocarditis bacteriana y brucelosis, se debe extraer sangre de la arteria cubital o de la arteria femoral. Además de extraer sangre cuando tiene fiebre, también debe extraer sangre varias veces (de 3 a 4 veces en 24 horas) y aumentar el volumen de extracción de sangre (puede aumentar en 10 ml).
(7) Enviar la sangre para su análisis inmediatamente después de su extracción. Si no se puede enviar a inspección de inmediato, puede dejarlo en el refrigerador y dejarlo a temperatura ambiente.
(8) Si las manifestaciones clínicas son similares a la sepsis y el hemocultivo es negativo varias veces, se recomienda considerar la posibilidad de bacterias anaeróbicas e infección por hongos.
Segundo, recolección de médula ósea
1. Método de recolección
Después de una desinfección estricta en la lesión o en la espina ilíaca antero (posterior) superior, 65438 ± 0 ml. de médula ósea se inyectó en un frasco de hemocultivo.
2. Medidas preventivas
(1) La médula ósea contiene una gran cantidad de células del sistema fagocítico mononuclear. Por lo tanto, el cultivo de médula ósea es mejor que el hemocultivo en el diagnóstico de pacientes con fiebre tifoidea. .
(2) Para pacientes con sospecha de osteomielitis bacteriana.
Tres. Recolección de muestras de catéter intravenoso
1. Método de recolección
(1) Desinfección cutánea de rutina del sitio del catéter.
(2) Retire el catéter intravenoso del cuerpo del paciente utilizando métodos asépticos, corte 5 cm de la punta del catéter y colóquelo en un frasco esterilizado.
(3) Envíe la muestra para su inspección inmediatamente (dentro de los 15 minutos) para evitar que se seque.
2. Medidas preventivas
(1) La inoculación inmediata del catéter cortado con una placa de sangre puede aumentar la tasa positiva.
(2) Lave repetidamente la luz del catéter con caldo y utilice el líquido de lavado para cultivo cuantitativo.
(3) Algunas personas colocan el catéter cortado en una solución de enriquecimiento de caldo o en un frasco de cultivo. Este método no puede diferenciar entre bacterias que infectan catéteres y bacterias colonizadoras de bajo volumen.
(4) El Ministerio de Salud estipula en los "Estándares de diagnóstico para infecciones médicas (ensayo)" (2001 1 3) que el método de inoculación para el cultivo de la punta del catéter es tomar 5 cm de la punta del catéter y enrollarlo. hacia adelante y hacia atrás sobre la superficie de la placa de sangre. Las bacterias ≥15 ufc/placa son positivas.
Cuarto, tracto respiratorio
1. Muestra de esputo
(1) Método de obtención
(1) Después de levantarse por la mañana , use frío Enjuáguese la boca con agua hirviendo varias veces para eliminar una gran cantidad de bacterias en la boca. Tose el pus en las profundidades de los pulmones y colóquelo en un recipiente limpio y seco para examinarlo.
②Aquellos con poca flema pueden usar 25 ml de solución de cloruro de sodio 3-10 para atomizar a 45 ℃. Para niños con poco esputo, comprima suavemente la tráquea por encima del esternón y use un hisopo de algodón esterilizado para recolectar muestras después de toser esputo.
③ Para pacientes con tos débil o coma, se puede utilizar un tubo de succión de esputo para aspirar el esputo a través de la cavidad nasal o la boca para examinarlo.
④Los pacientes con traqueotomía pueden penetrar profundamente en el estoma para recoger el esputo.
⑤ Las bacterias patógenas en alta concentración se pueden recolectar directamente de la lesión mediante broncoscopia.
⑥ Inserte el catéter estéril en el broncoscopio a través de la cavidad nasal, inyecte lentamente 5 ml de agua destilada estéril y retire el catéter. Tome el esputo tosido por el paciente dentro de las 3 horas siguientes y colóquelo en un recipiente esterilizado para analizarlo.
⑦Recoge esputo en el estómago. Pacientes tuberculosos asintomáticos. A veces, el esputo se ingiere accidentalmente en el estómago, por lo que se utiliza lisado gástrico para el cultivo de tuberculosis. El resultado positivo es aproximadamente 10 mayor que el de la expectoración. Por la mañana, con el estómago vacío, coloque la sonda gástrica esterilizada en el estómago desde la cavidad nasal y utilice una jeringa de 20 ml para extraer el jugo gástrico.
(2) Precauciones
① La recolección de muestras de esputo se basa en el esputo de la mañana, cuando los pacientes tienen mucha flema y bacterias.
②Envíe para inspección inmediatamente después de la recogida. Si la muestra no se puede enviar a tiempo, se puede almacenar temporalmente en un refrigerador a 2-8 ℃. Si se inocula después de 1 a 2 horas, las bacterias aeróbicas se perderán y las bacterias Gram negativas crecerán en exceso.
③Muestras aceptables: esputo; líquido de lavado bronquial; biopsia bronquial; Muestras no calificadas: saliva; esputo retenido durante 24 horas (excepto cultivo de Mycobacterium tuberculosis);
④Evaluación de la calidad de las muestras de esputo: Comprobar las células epiteliales escamosas bajo un microscopio de baja potencia, con al menos 65.438 00 campos de visión, concentrados en zonas con glóbulos blancos. Las muestras calificadas son aquellas cuando la proporción de glóbulos blancos y células epiteliales escamosas es superior a 2:65.438,0.
2. Hisopo nasal
(1) Utilice un hisopo húmedo (solución salina normal)
(2) Es necesario insertarlo en ambas fosas nasales; >
(3) Profundiza. Aproximadamente 3 cm, girar 4-5 veces;
(4) El método anterior se utiliza para diagnosticar portadores nasales en epidemias de Staphylococcus aureus.
3. Hisopos de garganta y hisopos orales
(1) Método de recolección (tomar hisopos de algodón especiales de la sala de bacterias)
①Después de que el paciente se enjuaga la boca con con agua, el examinador saca la lengua y limpia la pared faríngea posterior o la parte posterior de la úvula varias veces con un hisopo de algodón.
② En casos de amigdalitis supurativa y candidiasis oral, limpie la lesión directamente con un hisopo; hisopo de algodón;
(3) Insértelo en el medio de transporte y revíselo inmediatamente para evitar que se seque.
(2) Precauciones
① Los hisopos de algodón deben evitar el contacto con la lengua, la mucosa oral y la saliva.
② No enjuagarse la boca con desinfectante varias horas antes; recogida de muestras O tocar lesiones locales.
Verbo (abreviatura de verbo) tracto gastrointestinal
1, heces
(1) Método de obtención
Selecciona pus, sangre y mocos Tomar 2-3 g de cada uno en las heces y 1-2 ml de flóculo en las heces líquidas. Colóquelo en una botella de esterilización o en una caja de cera para una inspección oportuna.
(2) Precauciones
①Se deben recolectar muestras frescas y viejas, lo que afectará la tasa de detección positiva;
②Evite mezclar heces y orina;
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(3) Si se va a aislar la ameba, la muestra debe enviarse para inspección inmediatamente y mantenerse caliente
④El transporte del medio de cultivo puede aumentar la tasa positiva;
⑤Aislamiento Cuando se detecta Clostridium difficile, elija heces no formadas o acuosas
⑥ La diarrea causada por Vibrio cholerae y Escherichia coli ο 157 es heces acuosas o con sangre; >⑦ Recolección de muestras En la etapa inicial de la patología o antes del tratamiento;
En general, se cree que después de tres días de usar medicamentos antibacterianos, el cultivo de la muestra será negativo para bacterias patógenas.
2. Hisopo anal
Cuando no se pueden obtener heces, se puede insertar un hisopo anal humedecido en agua glicerinada o solución salina esterilizada en el ano 4-5 cm (en niños de 2- 3 cm), luego gírelo suavemente para limpiar la mucosidad en la superficie rectal, luego retírela y colóquela en el medio de transporte para su inspección.
VI. Tracto Urinario
Según las “Normas de Diagnóstico de Infecciones Médicas” (Ensayo) promulgadas por el Ministerio de Salud, el diagnóstico clínico del aparato urinario es: el paciente tiene micción frecuente, urgencia, disuria y otros síntomas urinarios. Síntomas de irritación patológica o sensibilidad en la parte inferior del abdomen, dolor por percusión en el área del riñón, con o sin fiebre, y una de las siguientes condiciones:
(1) Prueba de orina, recuento de glóbulos blancos ≥5/campo de alto aumento para hombres, ≥10 para mujeres/campo de visión de alto aumento. Los pacientes con catéter urinario deben someterse a un urocultivo.
(2) Se ha diagnosticado clínicamente una infección del tracto urinario o se ha reconocido que el tratamiento antimicrobiano de la infección del tracto urinario es eficaz.
1. Orina media
(1) Método de obtención
①Agua con jabón o 0. Enjuague la vulva con 1 taza de solución de permanganato de potasio, orine por separado usando el dedo X en la vagina, deseche la primera orina, no deje de orinar y deje 10 ml de orina del medio en un recipiente esterilizado.
②Para los hombres, enjuague la abertura uretral con agua y jabón, o 0. Desinfectar la abertura uretral con 1 solución de yodóforo, secarla con una gasa esterilizada, levantar el prepucio y desechar la orina anterior sin dejar de orinar. Dejar 10 ml de orina a mitad de chorro en un recipiente esterilizado.
(2) Precauciones
①Aunque el cateterismo puede reducir la contaminación, el cateterismo repetido puede causar infección retrógrada, por lo que en los últimos años se utiliza a menudo la orina de la sección media.
② Es mejor que las pacientes adopten la posición de litotomía de la vejiga, y las enfermeras pueden tomar muestras para reducir la contaminación.
③Es mejor recoger la primera orina por la mañana.
(4) Después de recolectar la muestra, si no se puede enviar para inspección dentro de 65438 ± 0 horas, se puede colocar en un refrigerador a 4 ℃ por un período de tiempo, pero no más de 8 horas. . Si la muestra de orina se deja a temperatura ambiente durante más de 2 horas, incluso si el recuento bacteriano es ≥104 ufc/ml, no se puede utilizar como base para el diagnóstico y la muestra se debe tomar nuevamente para realizar pruebas.
⑤Cuando se sospecha uretritis, los primeros 3-4 ml de orina se pueden recoger en un recipiente estéril. Incluso si hay algunas bacterias en la orina, si se encuentran las mismas bacterias después de repetidas pruebas, deben considerarse bacterias patógenas.
⑥En la mayoría de los casos, la vulva de las niñas no se limpia lo suficiente, lo que dificulta la recogida de muestras. Si hay un aumento significativo de bacterias en la orina, se puede sospechar altamente de una infección del tracto urinario y se puede negar la infertilidad.
⑦ Si los resultados del cultivo bacteriano muestran dos o más tipos de bacterias, se debe considerar la posibilidad de contaminación y se recomienda tomar muestras nuevamente para su inspección.
⑧ No se pueden agregar conservantes ni desinfectantes a la orina, de lo contrario afectará la tasa de detección positiva.
2. Método de recogida por cistocentesis
Es muy difícil evitar la contaminación. Cuando los resultados del cultivo no coinciden con la afección, o cuando se cultivan bacterias anaeróbicas en la orina, o cuando es difícil recolectar orina en la mitad de la infancia, la orina se puede recolectar mediante punción de la vejiga a través del hueso púbico.
3. Método de recolección del catéter permanente
Desenchufe la bolsa de recolección de orina de drenaje cerrada, deseche la orina en la parte frontal del catéter y deje 10 ml de orina en la vejiga para su examen. . No tome la muestra del extremo inferior de la bolsa recolectora de orina.
7. Líquido cefalorraquídeo
1. Método de recogida
Los médicos recogen de 3 a 5 ml de líquido cefalorraquídeo (bacterias, 1 ml, hongos, 2 ml, bacilos acidorresistentes, 2 ml, virus). 1 ml) en tubos de ensayo o viales esterilizados y enviarlos inmediatamente para su análisis.
2. Medidas preventivas
(1) Enviar muestras para inspección inmediatamente después de su recolección. Streptococcus pneumoniae y Haemophilus influenzae también son susceptibles a la muerte porque Neisseria meningitidis se autoliza rápidamente fuera del cuerpo.
(2) Cuando se sospecha la infección bacteriana mencionada anteriormente, se debe prestar atención a la conservación del calor y al almacenamiento en el refrigerador o no se permiten bajas temperaturas.
8. Bilis
1. Método de drenaje duodenal
Bajo operación aséptica, cuando el catéter duodenal se traga en el duodeno Cuando se localiza el pezón (65- A 70 cm del diente), recoja el líquido A (de color naranja o dorado que sale del colédoco) y luego inyecte 40 ml de solución de sulfato de magnesio 25. Después de 1 a 2 minutos, tome el líquido B (de color marrón verdoso de la vesícula biliar) y luego recoja el líquido C (del conducto hepatobiliar).
2. Método de punción de la vesícula biliar
La bilis se puede extraer al mismo tiempo que la colecistografía.
3 Métodos quirúrgicos
Perforar directamente el colédoco y la vesícula biliar para recoger la bilis.
Las muestras recolectadas anteriormente deben enviarse para su examen inmediatamente; de lo contrario, deben colocarse en un refrigerador a 4°C. Al recolectarlas, se debe tener cuidado para evitar la contaminación por bacterias en la saliva y el líquido duodenal.
9. Muestras de líquido de punción
El líquido de punción incluye derrame pleural, ascitis, líquido pericárdico, líquido sinovial y líquido de la vaina.
1. Método de recogida
La extracción por punción la realizan los médicos. Se pueden recolectar de 5 a 10 ml de líquido torácico y ascítico, de 2 a 5 ml de líquido pericárdico y líquido sinovial, colocarlos en un tubo de ensayo o vial estéril que contenga anticoagulante, mezclar bien y enviar para examen inmediatamente. Anticoagulante 10 EDTA sal disódica, la proporción entre muestra y anticoagulante es 10:1.
2. Medidas preventivas
(1) Las muestras deben recolectarse antes de que el paciente tome el medicamento o 1-2 días después de suspender el medicamento.
⑵ Si; no se puede enviar inmediatamente para su examen, se puede almacenar en un refrigerador a 4 ° C.
⑶ El líquido sinovial de pacientes con sospecha de artritis por gonorrea debe enviarse para su examen inmediatamente después de su recolección, o es mejor realizar un cultivo junto a la cama; ;
(4) No utilice hisopos de algodón para sumergir las muestras para realizar la prueba.
10. Pus y secreciones de lesiones
1. Heridas
(1) Métodos de recolección y precauciones para hisopos de heridas superficiales
①Limitado a piel y tejido subcutáneo, incluidas incisiones quirúrgicas, úlceras de decúbito, onfalitis neonatal y abscesos infantiles.
② Use solución salina estéril o alcohol al 75% para limpiar los exudados en la superficie de la lesión.
(3) Limpie con un hisopo de algodón esterilizado y envíe el pus o tejido profundo; para examen;
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④ Al recolectar muestras de úlcera de decúbito, se deben recolectar secreciones purulentas del borde del decúbito y, en su lugar, se debe colocar el hisopo en el medio de transporte y enviarlo para inspección inmediatamente. de recoger exudados de la herida.
⑵ Métodos de recogida y precauciones en heridas, abscesos, tractos sinusales y tejido gangrenoso.
① Después del absceso atrésico, desinfecte la piel con yodo y alcohol, y luego use una jeringa esterilizada para pinchar y extraer todo el pus para examinarlo. Cuando se sospecha una infección anaeróbica, drene el aire del tubo de la aguja e inserte la aguja en un tapón de goma esterilizado para su inspección;
(2) Si hay pus y exudado en la herida, use un hisopo de algodón esterilizado en cada área, limpie el interior del seno, raspe con un cuchillo, perfore la aspiración o extráigala quirúrgicamente para obtener muestras de heridas profundas;
③En caso de hemorragia traumática, no es apropiado recolectar muestras dentro de las 2 horas posteriores a la medicación. y dentro de las 12 horas posteriores a la quemadura. En este momento, las posibilidades de obtener un resultado positivo son escasas.
④Observar el carácter, color y olor del pus y secreciones. Puede proporcionar una base para la identificación cultural.
⑶Heridas por quemaduras
①Las heridas por quemaduras requieren secreciones purulentas, y la escara se separa rápidamente y se vuelve marrón negruzca, negra o violeta, y los bordes de la quemadura están edematosos. El paciente tiene fiebre >38℃ o hipotermia
②Enjuague la herida con solución salina esterilizada.
(3) Dado que las diferentes ubicaciones de las heridas tienen diferentes tipos de bacterias, es necesario utilizar hisopos de algodón esterilizados para recolectar áreas inflamadas de múltiples ubicaciones para examinarlas.
④Recoja el líquido de drenaje negro o desnaturalizado del borde de la sala o debajo de la costra para cultivo cuantitativo y biopsia de tejido.
2. Hisopos anaeróbicos para heridas
(1) Se pueden usar hisopos de algodón especiales anaeróbicos o varillas de vidrio para tocar el pus profundo.
(2) Utilice una jeringa; para aspirar y drenar Compruebe el aire en el tubo de la aguja insertando la aguja en el tapón de goma esterilizado;
(3) Envíe para inspección inmediatamente y debe almacenarse en condiciones anaeróbicas;
⑷El esputo, los hisopos de garganta, los hisopos nasofaríngeos, los hisopos de encías, los hisopos rectales, los hisopos vaginales, los hisopos cervicales, así como el efluente de la ileostomía y la colostomía, y el contenido del estómago, el intestino delgado y el intestino grueso no son adecuados para el uso de bacterias anaeróbicas. cultura.
3. Hisopo de secreción uretral
(1) Los machos limpian y limpian la abertura uretral con una gasa esterilizada y luego eliminan las secreciones purulentas que se desbordan de la abertura uretral;
(2) Al recolectar líquido prostático, primero se debe enjuagar la uretra y la vejiga, y luego se debe masajear la próstata con los dedos comenzando desde el ano para hacer que el líquido prostático se desborde;
(3 ) Las pacientes femeninas primero deben usar esterilizados. Limpie o limpie con cuidado la abertura uretral con una gasa o hisopos de algodón y luego presione la uretra desde el sitio del diagnóstico vaginal para hacer que las secreciones se desborden;
(4) Tome las secreciones cervicales Primero use un endoscopio para dilatar la vagina y luego use hisopos de algodón esterilizados para recolectar las secreciones cervicales para evitar la contaminación por la flora normal cerca de la vagina y el cuello uterino.
4. Celulitis
(1) Utilice solución salina estéril o alcohol para desinfectar la piel.
(2) Utilice una aguja fina para aspirar la parte más prominente; de la inflamación. Aspirar;
(3) Bombear una pequeña cantidad de solución salina estéril en el tubo de la aguja;
(4) Inyectar en un tubo de ensayo estéril para realizar pruebas.
5. Muestras de tejido
(1) Las micromuestras tomadas de tejidos vivos se pueden inocular directamente en el medio de cultivo.
(2) Los tejidos superficiales se pueden inocular; límpielo directamente con un hisopo de algodón y raspe con un cuchillo.
⑶ La superficie de los bloques de tejido más grandes se puede quemar o remojar en agua hirviendo durante 5 a 10 segundos y luego cortar con tijeras esterilizadas; para eliminar el pus
(4 ) Se pueden tomar muestras de tejido profundo para examinarlas mediante punción de la piel o cirugía;
5] Las muestras de tejido no se pueden fijar con Forma X;
[6] A veces, las muestras de tejido teñidas con pus pueden ser El apósito interior se coloca en un recipiente esterilizado para su inspección.
11. Recolección de muestras oculares
(1) Para bacterias generales, utilice hisopos de algodón esterilizados para recolectar secreciones oculares, especialmente secreciones purulentas;
(2) Chlamydia trachomatis: primero limpie las secreciones sobre la conjuntiva, luego use un cuchillo esterilizado para raspar el fondo de saco y las células epiteliales de la conjuntiva y trátelo con estreptomicina para su uso posterior;
⑶ Para aquellos que acaban de recibir el medicamento tratamiento o enrojecimiento Para pacientes con dacriocistitis, es mejor recolectar muestras después de 12 a 24 horas;
⑷Para pacientes con dacriocistitis, las muestras se pueden recolectar con un hisopo de algodón esterilizado después de apretar ligeramente.
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